ДОСЛІДЖЕННЯ НАЙНОВІШИХ РОЗРОБОК У ЗАСТОСУВАННІ СТОВБУРОВИХ КЛІТИН ДЛЯ РЕГЕНЕРАЦІЇ ТКАНИН ТА СТРУКТУР ЗУБА. (ОГЛЯД ЛІТЕРАТУРИ)
DOI:
https://doi.org/10.32689/2663-0672-2025-2-17Ключові слова:
регенеративна стоматологія, стовбурові клітини, одонтогенез, зубна тканинаАнотація
Етіологія втрати зубів є багатофакторною і включає карієс, пародонтопатію, травми та системні захворювання. Незважаючи на значні досягнення в імпалантації та протезуванні, штучні зуби не можуть повністю замінити природні. Зубні стовбурові клітини виявляють значний потенціал для регенеративної стоматології. Їх здатність до самооновлення та диференціації робить їх перспективним джерелом клітин для відновлення пульпи, періодонтальної зв’язки та навіть для створення нових зубних структур.Мета дослідження. Провести аналіз та систематизацію наукових публікацій, присвячених дослідженню застосування стовбурових клітин, які демонструють найвищу ефективність у процесах регенерації тканин зуба.Матеріали та методи дослідження. У ході дослідження було проаналізовано наукові розробки, опубліковані на дослідницьких платформах Google Академія та PubMed. Було використано бібліосемантичний аналіз з метою виділення ключових аспектів та їх класифікації за визначеними категоріями. Пошук матеріалів по ключовим словам як “dental stem cells”, “induced pluripotent stem cells”, “dental lamina rests” здійснювався переважно у пошуковій системі Google Академія та PubMed (NCBI) (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/). Відібрані наукові роботи були піддані ретельному аналізу з метою виділення ключових моментів та їх класифікації до різних підтем.Висновки. Глибокий аналіз сучасних досліджень у сфері регенеративної медицини, зокрема використання стовбурових клітин для відновлення зубних тканин, демонструє широкий спектр потенційних джерел для регенерації як твердих, так і м’яких тканин зуба. Однак, актуальним завданням залишається розробка ефективних стратегій, які б дозволили уникнути ризику розвитку злоякісних новоутворень в процесі регенерації.
Посилання
Advancements in Periodontal Regeneration: A Comprehensive Review of Stem Cell Therapy. T. Bharuka, A. Reche. Cureus. 2024 Feb 13. 16(2). e54115.
Advances and Perspectives in Dental Pulp Stem Cell Based Neuroregeneration Therapies. J. Luzuriaga, Y. Polo, O. Pastor-Alonso, B. Pardo-Rodríguez, A. Larrañaga, F. Unda, J.-R. Sarasua, J.R. Pineda, G. Ibarretxe. Mol. Sci. 2021. 22. P.3546.
Advances in tooth agenesis and tooth regeneration. V. Ravi, A. Murashima-Suginami, H. Kiso, Y. Tokita, C.L. Huang, K. Bessho, J. Takagi, M. Sugai, Y. Tabata, K. Takahashi. Regenerative Therapy. 2023. Volume 22. P. 160–168.
Age of the donor affects the nature of in vitro cultured human dental pulp stem cells. H. Alzer, H. Kalbouneh, F. Alsoleihat, N. Abu Shahin, S. Ryalat, M. Alsalem, H. Alahmad, L. Tahtamouni. Saudi Dent J. 2021 Nov. 33(7). P. 524–532.
A novel culture system for porcine odontogenic epithelial cells using a feeder layer.M.J. Honda,T. Shimodaira, T. Ogaeri, Y. Shinohara,K. Hata, M. Ueda. Arch. Oral Biol. 2006. 51. P. 282–290.
Asymmetry Index for the Photogrammetric Assessment of Facial Asymmetry. A. Blasi, R. Nucera,V. Ronsivalle, E. Can- dida, C. Am. J. Grippaudo. Orthod. Dentofac. Orthop. 2022. 162. P. 394–402.
Biological functionality of extracellular matrix-ornamented three-dimensional printed hydroxyapatite scaffolds. A. Kumar, K. C. Nune, R. D. K. Misra. Journal of biomedical materials Research. 2016. Vol. 104. P. 1343–1351.
Bioprinting techniques for regeneration of oral and craniofacial tissues: Current advances and future prospects. S. Varshney, A. Dwivedi, V. Pandey. J Oral Biol Craniofac Res. 2025 Mar-Apr. 15(2). P. 331–346.
Bone morphogenetic protein 2 coordinates early tooth mineralization. / Z. Malik, M. Alexiou, B. Hallgrimsson, A.N. Economides, D H.U. Luder, D. J. Graf. Dent. Res. 2018. 97. P.835–843.
Children Oral Health and Parents Education Status: A Cross Sectional Study. G. Minervini, R. Franco, M.M. Marrapodi, M. Di Blasio,V. Ronsivalle, M. Cicciù. BMC Oral Health. 2023. 23. P. 787.
Chronic Periodontitis and Immunity, Towards the Implementation of a Personalized Medicine: A Translational Research on Gene Single Nucleotide Polymorphisms (SNPs) Linked to Chronic Oral Dysbiosis in 96 Caucasian Patients. F. Inchingolo,F.S. Martelli, C. Gargiulo Isacco, E. Borsani, S. Cantore, F. Corcioli, A. Boddi, K.C.D. Nguyễn,D. De Vito, S. K. Aityan. Biomedicines. 2020. 8. P. 115
Clinical trials using dental stem cells: 2022 update. W.P. Song, L.Y. Jin, M.D. Zhu, H. Wang, D.S. Xia, J. World. Stem Cells. 2023.15(3). P.31–51.
Comparison of glutaraldehyde and procyanidin cross-linked scaffolds for soft tissue engineering. Y. Yang, A.C. Ritchie, N. M. Everitt. Mat. Sci. Eng. 2017. 80. P. 263–273.
Daughters of the enamel organ: Development, fate, and function of the stratum intermedium, stellate reticulum, and outer enamel epithelium./ H. Liu, X. Yan, M. Pandya, X. Luan, T.G.H. Diekwisch. Stem Cells Dev. 2016. 25. P.1580–1590.
Dental Pulp Stem Cell Heterogeneity: Finding Superior Quality "Needles" in a Dental Pulpal "Haystack" for Regenerative Medicine-Based Applications. Z. Y. Kok, N.Y.A. Alaidaroos, A. Alraies, J.S. Colombo, L. C. Davies, R. J. Waddington, A. J. Sloan, R. Moseley. Stem Cells Int. 2022 Jan 4. 2022. 9127074.
Designing new treatment strategies in vital pulp therapy./ D. Tziafas, A. J. Smith, H. Lesot. Journal of Dentistry. 2000. 28 (2). P. 77–92.
Effect of Fabrication Technology on the Accuracy of Surgical Guides for Dental-Implant Surgery. L. Lo Russo, L. Guida, P. Mariani, V. Ronsivalle,C. Gallo,M. Cicciù, L. Laino. Bioengineering. 2023. 10, P.875.
Enamel tissue engineering using subcultured enamel organ epithelial cells in combination with dental pulp cells. M. J. Honda, Y. Shinmura, Y. Shinohara. Cells Tissues Organs. 2009. 189. P. 261–267.
Establishment and characterization of a spontaneously immortalized mouse ameloblast-lineage cell line. A. Nakata, T. Kameda, T. Nagai,K. Ikegami, Y. Duan, K. Terada,T. Sugiyama. BioChem. Biophys. Res. Commun. 2003. 308. P. 834–839.
Generation of tooth-like structures from integration-free human urine induced pluripotent stem cells. J. Cai, Y. Zhang, P. Liu, S. Chen, X. Wu, Y. Sun, A. Li, K. Huang, R. Luo. Cell Regen. 2013. 2. P. 2–6.
Growth factors regulate expression of mineral associated genes in cementoblasts.N. E. Saygin, Y. Tokiyasu, W. V. Gi- annobile, M. J. Somerman. J. Periodontol. 2000. 71. P. 1591–1600.
Hypoxia increases the expression of enamel genes and cytokines in an ameloblast-derived cell line. R. Sidaly, M. A. Landin, Z. Suo, M. L. Snead, S. P. Lyngstadaas, J. E. Reseland. Eur. J. Oral Sci. 2015. 123. P. 335–340.
Induction of human keratinocytes into enamel-secreting ameloblasts. B. Wang, L. Li, S. Du, C. Liu, X. Lin, Y. Chen, Y. Zhang. Dev. Biol. 2010. 344. P. 795–799.
Induction of enamel matrix protein expression in an ameloblast cell line co-cultured with a mesenchymal cell line in vitro./A. Matsumoto, H. Harada, M. Saito, A. Taniguchi. In Vitro Cell Dev. Biol. Anim. 2010. 47. P. 39–44.
Innovative Concepts and Recent Breakthrough for Engineered Graft and Constructs for Bone Regeneration: A Lit- erature Systematic Review. F. Inchingolo, D. Hazballa, A. D. Inchingolo, Malcangi, G.; G. Marinelli, A. Mancini, M. E. Maggiore, I. R.Bordea, A. Scarano, M. Farronato. Materials. 2022. 15. P. 1120.
Isolation and culture of dental epithelial stem cells from the adult mouse incisor./M.G. Chavez, J. Hu, K. Seidel K., C. Li, A. Jheon, A. Naveau, O. Horst, O. D. Klein. J. Vis. Exp. 2014. 87. P. 51266.
Leptin induces odontogenic differentiation and angiogenesis in human dental pulp cells via activation of the mitogen-activated protein kinase signaling pathway. V. A. Ngo, J.-Y. Jung, J.-T. Koh, W.-M Oh, Y.-C. Hwang, B.-N. Lee. J. Endod. 2018. 44. P. 585–591.
Local application of Usag-1 siRNA can promote tooth regeneration in Runx2-deficient mice. S. Mishima, K. Takahashi. Sci Rep11. 2021. P. 13674.
Mesenchymal stem cells derived from dental tissues vs. those from oTher. sources: Their biology and role in regenerative medicine. G.T.-J. Huang, S. Gronthos, S. Shi. J. Dent. Res. 2009. 88. P. 792–806.
Mesenchymal stem cells: Paradoxes of passaging. E. H. Javazon, K.J. Beggs, A.W. Flake. Exp. Hematol. 2004. 32. P. 414–425.
Mesenchymal Stem Cells Secretome: Current Trends and Future Challenges. F. G. Teixeira, A. J. Salgado. Neural Regen. Res. 2020. 15. P. 75–77.
Progress in the Use of Dental Pulp Stem Cells in Regenerative Medicine/ E. Anitua, M. Troya, M. Zalduendo. Cytotherapy. 2018. 20. P. 479–498.
Pulp stem cells: implication in reparative dentin formation. S. Dimitrova-Nakov, A. Baudry, Y. Harichane, O. Kellermann, M. Goldberg. Journal of Endodontics. 2014. 40(4). S13–S18.
Quiescent adult stem cells in murine teeth are regulated by Shh signaling./ Y. Ishikawa, M. Nakatomi, H. Ida-Yonemochi, H. Ohshima. Cell Tissue Res. 2017. 369. P. 497–512.
Quiescent epithelial cell rests of Malassez can differentiate into ameloblast-like cells. Y. Shinmura, S. Tsuchiya, K. Hata, M. J. Honda. J. Cell Physiol. 2008. 217. P. 728–738.
Regenerative Strategies in Dentistry: Harnessing Stem Cells, Biomaterials and Bioactive Materials for Tissue Repair. V.R. Umapathy, P.M. Natarajan, B. Swamikannu. Biomolecules. 2025 Apr 8. 15(4). P. 546.
Telomere Attrition in Human Dental Pulp Stem Cells: Implications for Regenerative Therapy. J. Mokry. International Journal of Molecular Sciences. 2021. 23(7). P. 3675.
The Mesenchymal Stem Cell Secretome: A New Paradigm towards Cell-Free Therapeutic Mode in Regenerative Medi- cine./ P. Kumar, S. Kandoi, R. Misra, S. Vijayalakshmi, K. Rajagopal, R. S. Verma. Cytokine Growth Factor Rev. 2019. 46. P. 1–9.
Therapeutic applications of dental pulp stem cells in regenerating dental, periodontal and oral-related structures. M. E. Grawis, M. A. Saeed, N. Sultan, B. A. Scheven. World J Meta-Anal. 2021. 9(2). P. 176-192.
The role of bioactive nanofibers in enamel regeneration mediated through integrin signals acting upon C/EBPα and c-Jun. Z. Huang, C. J. Newcomb, Y. Zhou, Y. P. Lei, P. Jr. Bringas, S. I. Stupp, M. L. Snead. Biomaterials. 2013. 34. P. 3303–3314.
Secretion of immunoregulatory cytokines by mesenchymal stem cells./ D. Kyurkchiev. World J. Stem Cells. 2014. 6. P. 552.
Skin epithelial cells as possible substitutes for ameloblasts during tooth regeneration. Y. Liu, M. Jiang, W. Hao, W. Liu, L. Tang, H. Liu, Y. Jin; J. Tissue Eng. Regen. Med. 2012. 7. P. 934–943.
Sonic hedgehog signaling and development of the dentition. M. Seppala, G. Fraser, A. Birjandi, G. Xavier, M. Cobourne. J. Dev. Biol. 2017. 5. P.6.
Stem cell and biomaterials research in dental tissue engineering and regeneration. O.V. Horst, M. G. Chavez, A. H. Jheon, T. Desai T, O. D. Klein. Dent Clin North Am. 2012 Jul. 56(3). P. 495–520.
Wnt/β-catenin regulates the activity of epiprofin /Sp6, SHH, FGF, and BMP to coordinate the stages of odontogenesis./ M. Aurrekoetxea, I. Irastorza, P. García-Gallastegui, L. Jiménez-Rojo, T. Nakamura, Y. Yamada, G. Ibarretxe, F. J. Unda. Front. Cell Dev. Biol. 2016. 4. P. 25.
##submission.downloads##
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
